LAPORAN PRAKTIKUM PEWARNAAN SEL BAKTERI - MIKROBIOLOGI KEHUTANAN PDF

Preview

Summary

LAPORAN PRAKTIKUM MIKROBIOLOGI KEHUTANAN BW-3205 Modul II: Pewarnaan Sel Bakteri Oleh: Muhammad Yunus Sulthan Azhar Idrus | 11518053 Kelompok 6 Asisten: Fitria Kusprayogo | 11417015 PROGRAM STUDI REKAYASA KEHUTANAN SEKOLAH ILMU DAN TEKNOLOGI HAYATI INSTITUT TEKNOLOGI BANDUNG 2021 MODUL II – MUHAMMAD...

Description

LAPORAN PRAKTIKUM MIKROBIOLOGI KEHUTANAN BW-3205 Modul II: Pewarnaan Sel Bakteri

Oleh: Muhammad Yunus Sulthan Azhar Idrus | 11518053 Kelompok 6 Asisten: Fitria Kusprayogo | 11417015

PROGRAM STUDI REKAYASA KEHUTANAN SEKOLAH ILMU DAN TEKNOLOGI HAYATI INSTITUT TEKNOLOGI BANDUNG 2021

MODUL II – MUHAMMAD YUNUS SULTHAN AZHAR IDRUS – 11518053

10 Februari 2021 Muhammad Yunus Sulthan Azhar Idrus – 11518053

MODUL II – MUHAMMAD YUNUS SULTHAN AZHAR IDRUS – 11518053

I.

LATAR BELAKANG Mengamati sel mikroba dalam keadaan aslinya cukup sulit, sebab itu diperlukan teknik khusus mikrobiologi. Disamping karena ukurannya yang kecil juga karena keberadaan selnya yang transparan. Sel-sel bakteri praktis tidak berwarna bila berada dalam keadaan terlarut dalam medium cair. Untuk memudahkan pengamatan sel bakteri yang tembus cahaya itu maka dikembangkan metode pewarnaan sel (Ariyani, et al., 2018). Umumnya bakteri dapat dengan mudah bereaksi dengan pewarna-pewarna sederhana karena sitoplasmanya bersifat basofilik sedangkan zat-zat warna yang digunakan untuk pewarnaan sederhana umumnya bersifat alkalin. Menurut Ariyani (2018), Teknik pewarnaan pada bakteri dapat dibedakan menjadi empat macam yaitu pengecatan sederhana, pengecatan negatif, pengecatan diferensial dan pengecatan struktural. Teknik pewarnaan diferensial merupakan prosedur pewarnaan yang menampilkan perbedaan di antara sel-sel bakteri atau bagian-bagian sel bakteri. Sedangkan pengecatan struktural seperti pengecatan endospora, flagella, dan kapsula hanya mewarnai satu bagian dari sel sehingga dapat membedakan bagian-bagian dari sel. Ada tiga macam metode pewarnaan yaitu pewarnaan sederhana yang mewarnai latar belakangnya, pewarnaan diferensial yang menggunakan lebih dari satu jenis pewarna, digunakan untuk membedakan bakteri, dan pewarnaan khusus untuk mewarnai dan mengisolasi bagian mikroorganisme endospora, kapsul, dan flagella (Tortora, et al., 2011). Bakteri tidak mengadsorbsi ataupun membiaskan cahaya yang menyebabkan sulit dilihat dengan mikroskop cahaya. Menurut Virgianti (2017), zat warna mengadsorbsi dan membiaskan cahaya sehingga kontras bakteri dengan sekelilingnya ditingkatkan. Dengan penerapan teknik pewarnaan sel bakteri ini dalam bidang Rekayasa Kehutanan akan mempermudah penentuan dan pengamatan mikroba.

II.

TUJUAN 1. Menentukan karakteristik morfologi bakteri dengan melakukan pewarnaan basa dan asam dari Bacillus subtilis, Escherichia coli, Staphylococcus aureus, dan Serratia marcescens

MODUL II – MUHAMMAD YUNUS SULTHAN AZHAR IDRUS – 11518053 2. Menentukan perbedaan dari pewarnaan basa dan asam 3. Menentukan komposisi dinding sel Bacillus subtilis, Staphylococcus aureus, Serratia marcescens, dan Escherichia coli berdasarkan hasil pewarnaan Gram 4. Menentukan bakteri yang mampu membentuk struktur endospora dengan melakukan pewarnaan endospora pada Bacillus subtilis dan Escherichia coli 5. Menentukan bakteri yang mampu membentuk kapsula dengan melakukan pewarnaan kapsula pada Serratia marcescens dan Enterobacter aerogenes III.

HIPOTESIS 1. Karakteristik morfologi bakteri Bacillus subtilis, Escherichia coli, dan Serratia marcescens berbentuk batang (bacilli), sedangkan Staphylococcus aureus berbentuk bulat (coccus) 2. Pewarna asam dan pewarna basa termasuk kedalam pewarnaan sederhana, keduanya hanya memiliki perbedaan pada objek yang diberi warna seperti pewarna asam mewarnai lingkungan bakteri sedangkan pewarna basa mewarnai bakteri 3. Bacillus subtilis dan Staphylococcus aureus merupakan bakteri Gram positif sedangkan Serratia marcescens dan Escherichia coli merupakan bakteri Gram negatif 4. Bacillus subtilis mampu membentuk struktur endospora sedangkan Escherichia coli tidak mampu membentuk struktur endospora 5. Serratia marcescens dan Enterobacter aerogenes diduga mampu membentuk kapsula

IV.

CARA KERJA 1. Persiapan Alat dan Bahan dengan Teknik Aseptik Praktikum pewarnaan sel bakteri diawali dengan menyiapkan alat dan bahan yang akan digunakan. Alat yang akan digunakan adalah mikroskop cahaya, kaca objek, cover glass, botol semprot, kawat oose, pembakar bunsen, penjepit kayu, pipa tetes, dan penangas air. Sedangkan bahan yang akan digunakan adalah akuades, nigrosine, crystal violet, lugol/iodin, alkohol 96%, safranin, kertas saring/kertas hisap, minyak imersi, larutan

MODUL II – MUHAMMAD YUNUS SULTHAN AZHAR IDRUS – 11518053 tembaga sulfat 20%, dan malakit hijau. Bakteri dalam medium na yang akan digunakan adalah Staphylococcus aureus umur 24 jam, Bacillus subtilis umur 24, Bacillus subtilis umur 48-72 jam, Serratia marcescens umur 24 jam, Escherichia coli umur 24 jam, dan Escherichia coli umur 48-72 jam. Lalu bakteri dalam medium skim milk yang akan digunakan yaitu Enterobacter aerogenes umur 48 jam dan Serratia marcescens umur 48 jam. Meja, tangan, serta peralatan yang akan digunakan harus dibersihkan terlebih dahulu menggunakan alkohol 70% untuk meminimalisir terjadinya kontaminasi. 2. Pembuatan Apusan Basah dan Kering Terdapat dua jenis apusan yang akan digunakan dalam praktikum ini, yaitu apusan kering dan apusan basah. Apusan kering atau preparat kering dapat dilakukan dengan dua metode yaitu fiksasi udara dan fiksasi panas. Preparat kering disiapkan dengan aquades yang diteteskan pada kaca objek terlebih dahulu. Untuk mengambil sampel bakteri, batang oose dipanaskan terlebih dahulu hingga membara dengan sudut kurang lebih 45 derajat. Setelah batang oose dingin, satu koloni bakteri diambil dan kemudian digoreskan pada kaca objek. Kaca objek yang sudah digoreskan dengan bakteri kemudian dipanaskan di atas bara api dengan ketinggian kurang lebih 5cm menggunakan penjepit kayu hingga kering. Batang oose yang telah selesai digunakan lalu dipanaskan kembali hingga membara, dengan sudut 45 derajat. Pembuatan apusan basah atau preparat segar juga diawali dengan aquades yang diteteskan pada kaca objek terlebih dahulu. Sampel kultur dapat diambil dengan spatula yang telah dipanaskan bagian pipihnya dan ditunggu hingga dingin. Spatula kemudian digunakan untuk mengambil sampel bakteri beserta agar atau mediumnya. Sampel tersebut diletakkan pada kaca objek dan dicacah menggunakan spatula. Sampel tersebut lalu ditutup menggunakan kaca objek dengan hati-hati untuk menghindari terbentuknya gelembung udara pada sampel. Spatula yang telah selesai digunakan lalu dipanaskan kembali sebelum disimpan.

MODUL II – MUHAMMAD YUNUS SULTHAN AZHAR IDRUS – 11518053

3. Pewarnaan Sederhana Asam Pewarnaan sederhana latar atau pewarnaan asam dilakukan dengan menyiapkan kristal violet atau nigrosin dan preparat kering terlebih dahulu. Setelah disiapkan, zat warna diteteskan sebanyak satu sampai dua tetes pada preparat, dan didiamkan selama satu sampai dua menit sebelum dibilas dengan air mengalir. Setelah itu, preparat dibersihkan dari air menggunakan tisu hingga kering. Kultur bakteri yang digunakan dalam pewaranaan sederhana asam ini adalah Bacillus subtilis berumur 24 jam dalam medium NA, Escherichia coli umur 24 jam dalam medium NA, Serratia marcescens berumur 24 jam dalam medium NA dan Staphylococcus aureus yang berumur 24 jam dalam medium NA. 4. Pewarnaan Sederhana Basa Pewarnaan bakteri dengan teknik pewarnaan basa dilakukan menggunakan bahan pewarna safranin atau kristal violet. Kultur bakteri yang digunakan dalam pewarnaan sederhana basa adalah Staphylococcus aureus umur 24 jam dalam medium NA, Bacillus subtilis umur 24 jam dalam medium NA, Serratia marcescens umur 24 jam dalam medium NA, dan Escherichia coli umur 24 jam dalam medium NA. Pertama-tama preparat kering disiapkan, lalu ditetesi dengan 1 hingga 2 tetes zat warna dan didiamkan selama 1 hingga 2 menit. Setelah itu kaca objek dibilas menggunakan air dan kelebihan air ditiriskan hingga kering menggunakan tisu atau kertas saring. 5. Pewarnaan Gram Sebelum melakukan pewarnaan gram, kristal violet disiapkan terlebih dahulu sebagai pewarna total. Bahan lain yang disiapkan juga adalah safranin sebagai pewarna pembanding, lugol, alkohol 96%, dan juga preparat kering. Selanjutnya, kristal violet diteteskan pada preparat sebanyak satu hingga dua tetes dan didiamkan selama satu menit sebelum dibilas menggunakan air mengalir.

Setelah itu, lugol diteteskan pada

preparat sebanyak satu sampai dua tetes dan didiamkan juga selama satu menit. Lugol yang berlebih pada preparat dapat dibuang saja dan preparat dibilas menggunakan alkohol 96%.

Selanjutnya, safranin diteteskan

MODUL II – MUHAMMAD YUNUS SULTHAN AZHAR IDRUS – 11518053 sebanyak satu hingga dua tetes pada preparat lalu didiamkan selama 30 detik, dibilas dengan air mengalir, dan dikeringkan menggunakan tissue. 6. Pewarnaan Endospora Alat dan bahan yang digunakan dalam pewarnaan endospora adalah preparat kering bakteri, malakit hijau, safranin, air mendidih, dan kawat kasa. Setelah alat dan bahan telah selesai disiapkan, bagian apusan bakteri dilapisi dengan kertas saring dan diletakan di atas kawat kasa. Selanjutnya malakit hijau diteteskan pada kertas saring selama 20 sampai 30 menit dan tidak dibiarkan kering. Kemudian kaca preparat diangkat dan didinginkan. Selanjutnya kaca preparat dibilang dengan air mengalir. Satu sampai dua tetes safranin diteteskan pada preparat dan didiamkan selama 30 detik. Selanjutnya kaca preparat dibilas dengan air mengalir dan dikeringkan. 7. Pewarnaan Kapsula Pewarnaan kapsula diawali dengan kristal violet yang diteteskan pada kaca objek yang sudah dibersihkan. Selanjutnya mikroba diambil secara aseptis dengan bunsen yang sudah dinyalakan untuk memanaskan batang oose. Lalu sebanyak satu loop oose koloni diambil dan dicacah pada kaca objek. Setelah selesai, batang oose dipanaskan kembali sembari menunggu kaca objek yang didiamkan selama lima sampai tujuh menit. Pewarna yang berlebih lalu dicuci dengan CuSO4 dan preparat siap untuk diamati menggunakan mikroskop. 8. Pengamatan dengan Mikroskop Cahaya Sebelum melakukan pengamatan, mikroskop cahaya harus sudah disambungkan terlebih dahulu ke arus listrik. Selanjutnya lensa okuler diputar kearah pengamat dan pengunci lensa dikencangkan. Mikroskop lalu dinyalakan dan diatur intensitas cahaya yang diinginkan. Selanjutnya preparat diletakkan pada meja objek dan diatur bagian yang akan diamati agar terkena cahaya dengan makrometer horizontal. Lensa objektif diatur pada perbesaran paling rendah, fokus kasar diatur menggunakan makrometer vertikal dan fokus halus diatur dengan mikrometer vertikal hingga fokus. Setelah fokus sudah ditemukan, perbesaran lensa objektif

MODUL II – MUHAMMAD YUNUS SULTHAN AZHAR IDRUS – 11518053 dinaikkan dengan penggeser lensa dari 4x hingga 40x. Pengamatan dengan perbesaran 100x harus diteteskan minyak imersi terlebih dahulu sebanyak satu tetes pada preparat dan pastikan preparat berada ditengah perbesaran 40x dan 100x saat diteteskan. Preparat diamati dengan melihat pada lensa okuler. Setelah pengamatan selesai, meja objek diturunkan dan kaca preparat dikeluarkan. Lensa dibersihkan dengan mengusap alkohol 96% atau Xylol yang diteteskan pada kertas lensa secukupnya. Lalu, mikroskop cahaya dimatikan dan lensa perbesaran diputar kembali menjadi perbesaran paling tinggi pada bagian dalam. Selanjutnya, meja objek dinaikkan kembali dan lensa okuler diputar dan dikunci menjadi seperti semula. Sebelum ditutup dengan plastik penutup, pastikan kabel sudah dicabut dan digulung mengelilingi mikroskop. V.

HASIL PENGAMATAN 1. Pewarnaan Sederhana Asam

Judul Percobaan: Pewarnaan asam apusan kering Bacillus subtilis Tanggal Praktikum: 10 Februari 2021 Tanggal Pengamatan: 10 Februari 2021 Waktu Pengamatan: Kultur: Bacillus subtilis Umur: 24 Jam Medium: Nutrient Agar (NA) Reagen: Nigrosin Gambar 5.1 Pewarnaan asam Bacillus subtilis (Sumber: Dokumentasi Kelompok 3, 2020)

Perbesaran: 40x Keterangan: Berbentuk batang

MODUL II – MUHAMMAD YUNUS SULTHAN AZHAR IDRUS – 11518053

Judul Percobaan: Pewarnaan asam apusan kering Escherichia coli Tanggal Praktikum: 10 Februari 2021 Tanggal Pengamatan: 10 Februari 2021 Waktu Pengamatan: Kultur: Escherichia coli Umur: 24 Jam Medium: Nutrient Agar (NA) Reagen: Nigrosin Gambar 5.2 Pewarnaan asam Escherichia coli (Sumber: Dokumentasi Kelompok 8, 2020)

Perbesaran: 100x Keterangan: Berbentuk batang

Judul Percobaan: Pewarnaan asam apusan kering Serratia marcescens Tanggal Praktikum: 10 Februari 2021 Tanggal Pengamatan: 10 Februari 2021 Waktu Pengamatan: Kultur: Serratia marcescens Umur: 24 Jam Medium: Nutrient Agar (NA) Gambar 5.3 Pewarnaan asam Serratia marcescens (Sumber: Dokumentasi Kelompok 5, 2020)

Reagen: Nigrosin Perbesaran: 40x Keterangan: Berbentuk batang

MODUL II – MUHAMMAD YUNUS SULTHAN AZHAR IDRUS – 11518053

Judul Percobaan: Pewarnaan asam apusan kering Staphylococcus aureus Tanggal Praktikum: 10 Februari 2021 Tanggal Pengamatan: 10 Februari 2021 Waktu Pengamatan: Kultur: Staphylococcus aureus Umur: 24 Jam Medium: Nutrient Agar (NA) Gambar 5.4 Pewarnaan asam Staphylococcus aureus (Sumber: Dokumentasi Kelompok 8, 2020)

Reagen: Nigrosin Perbesaran: 100x Keterangan: Berbentuk bulat

2. Pewarnaan Sederhana Basa

Judul Percobaan: Pewarnaan basa apusan kering Bacillus subtilis Tanggal Praktikum: 10 Februari 2021 Tanggal Pengamatan: 10 Februari 2021 Waktu Pengamatan: Kultur: Bacillus subtilis Umur: 24 Jam Medium: Nutrient Agar (NA) Gambar 5.5 Pewarnaan basa Bacillus subtilis (Sumber: Dokumentasi Kelompok 5, 2020)

Reagen: Safranin Perbesaran: 100x Keterangan: Berbentuk batang

MODUL II – MUHAMMAD YUNUS SULTHAN AZHAR IDRUS – 11518053

Judul Percobaan: Pewarnaan basa apusan kering Escherichia coli Tanggal Praktikum: 10 Februari 2021 Tanggal Pengamatan: 10 Februari 2021 Waktu Pengamatan: Kultur: Escherichia coli Umur: 24 Jam Medium: Nutrient Agar (NA) Reagen: Methilen Blue Gambar 5.6 Pewarnaan basa Escherichia coli (Sumber: Dokumentasi Kelompok 8, 2020)

Perbesaran: 100x Keterangan: Berbentuk batang

Judul Percobaan: Pewarnaan basa apusan kering Serratia marcescens Tanggal Praktikum: 10 Februari 2021 Tanggal Pengamatan: 10 Februari 2021 Waktu Pengamatan: Kultur: Serratia marcescens Umur: 24 Jam Medium: Nutrient Agar (NA) Reagen: Kristal Violet Gambar 5.7 Pewarnaan basa Serratia marcescens (Sumber: Dokumentasi Kelompok 3, 2020)

Perbesaran: 40x Keterangan: Berbentuk batang

MODUL II – MUHAMMAD YUNUS SULTHAN AZHAR IDRUS – 11518053

Judul Percobaan: Pewarnaan basa apusan kering Staphylococcus aureus Tanggal Praktikum: 10 Februari 2021 Tanggal Pengamatan: 10 Februari 2021 Waktu Pengamatan: Kultur: Staphylococcus aureus Umur: 24 Jam Medium: Nutrient Agar (NA) Reagen: Methilen Blue Gambar 5.8 Pewarnaan basa Staphylococcus aureus (Sumber: Dokumentasi Kelompok 8, 2020)

Perbesaran: 100x Keterangan: Berbentuk batang

3. Pewarnaan Gram Judul Percobaan: Pewarnaan Gram apusan kering Bacillus subtilis Tanggal Praktikum: 10 Februari 2021 Tanggal Pengamatan: 10 Februari 2021 Waktu Pengamatan: Kultur: Bacillus subtilis Umur: 24 Jam Medium: Nutrient Agar (NA) Reagen: Kristal Violet, Lugol, Alkohol 96%, dan Safranin. Gambar 5.9 Pewarnaan Gram Bacillus subtilis (Sumber: Dokumentasi Kelompok 3, 2020)

Perbesaran: 100x Keterangan: Berwarna ungu, maka Gram positif

MODUL II – MUHAMMAD YUNUS SULTHAN AZHAR IDRUS – 11518053

Judul Percobaan: Pewarnaan Gram apusan kering Escherichia coli Tanggal Praktikum: 10 Februari 2021 Tanggal Pengamatan: 10 Februari 2021 Waktu Pengamatan: Kultur: Escherichia coli Umur: 24 Jam Medium: Nutrient Agar (NA) Reagen: Kristal Violet, Lugol, Alkohol 96%, dan Safranin. Gambar 5.10 Pewarnaan Gram Escherichia coli (Sumber: Dokumentasi Kelompok 6, 2020)

Perbesaran: 100x Keterangan: Berwarna merah, maka Gram negatif Judul Percobaan: Pewarnaan Gram apusan kering Serratia marcescens Tanggal Praktikum: 10 Februari 2021 Tanggal Pengamatan: 10 Februari 2021 Waktu Pengamatan: Kultur: Serratia marcescens Umur: 24 Jam Medium: Nutrient Agar (NA) Reagen: Kristal Violet, Lugol, Alkohol 96%, dan Safranin.

Gambar 5.11 Pewarnaan Gram Serratia marcescens (Sumber: Dokumentasi Kelompok 5, 2020)

Perbesaran: 100x Keterangan: Berwarna ungu, maka Gram positif

MODUL II – MUHAMMAD YUNUS SULTHAN AZHAR IDRUS – 11518053

Judul Percobaan: Pewarnaan Gram apusan kering Staphylococcus aureus Tanggal Praktikum: 10 Februari 2021 Tanggal Pengamatan: 10 Februari 2021 Waktu Pengamatan: Kultur: Staphylococcus aureus Umur: 24 Jam Medium: Nutrient Agar (NA) Reagen: Kristal Violet, Lugol, Gambar 5.12 Pewarnaan Gram Staphylococcus aureus (Sumber: Dokumentasi Kelompok 6, 2020)

Alkohol 96%, dan Safranin. Perbesaran: 100x Keterangan: Berwarna ungu, maka Gram positif

4. Pewarnaan Endospora Judul Percobaan: Pewarnaan Endospora Bacillus subtilis Tanggal Praktikum: 10 Februari 2021 Tanggal Pengamatan: 10 Februari 2021 Waktu Pengamatan: Kultur: Bacillus subtilis Umur: 48 – 72 Jam Medium: Nutrient Agar (NA) Reagen: Malakit hijau & Safranin Gambar 5.13 Pewarnaan Endospora Bacillus subtilis (Sumber: Dokumentasi Kelompok 3, 2020)

Perbesaran: 40x Keterangan: Tidak terdapat Endospora

MODUL II – MUHAMMAD YUNUS SULTHAN AZHAR IDRUS – 11518053

Judul Percobaan: Pewarnaan Endospora Escherichia coli Tanggal Praktikum: 10 Februari 2021 Tanggal Pengamatan: 10 Februari 2021 Waktu Pengamatan: Kultur: Escherichia coli Umur: 48 – 72 Jam Medium: Nutrient Agar (NA) Reagen: Malakit hijau & Safranin Gambar 5.14 Pewarnaan Endospora Escherichia coli (Sumber: Dokumentasi Kelompok 8, 2020)

Perbesaran: 100x Keterangan: Terdapat Endospora berwarna hijau pada tengah sel

5. Pewarnaan Kapsula Judul Percobaan: Pewarnaan Kapsula Serratia marcescens Tanggal Praktikum: 10 Februari 2021 Tanggal Pengamatan: 10 Februari 2021 Waktu Pengamatan: Kultur: Serratia marcescens Umur: 48 Jam Medium: Skimmed Milk Reagen: Kristal violet & CuSO4 20% Gambar 5.15 Pewarnaan Kapsula Serratia marcescens (Sumber: Dokumentasi Kelompok 3, 2020)

Perbesaran: 40x Keterangan: Tidak terdapat kapsula

MODUL II – MUHAMMAD YUNUS SULTHAN AZHAR IDRUS – 11518053

Judul Percobaan: Pewarnaan Kapsula Enterobacter aerogenes Tanggal Praktikum: 10 Februari 2021 Tanggal Pengamatan: 10 Februari 2021 Waktu Pengamatan: Kultur: Enterobacter aerogenes Umur: 48 Jam Medium: Skimmed Milk Reagen: Kristal violet & CuSO4 Gambar 5.16 Pewarnaan Kapsula Enterobacter aerogenes (Sumber: Dokumentasi Kelompok 8, 2020)

20% Perbesaran: 40x Keterangan: Terdapat kapsula pada luar sel

VI.

PEMBAHASAN Prinsip dasar dari pewarnaan adalah adanya ikatan ion antara komponenselular dari bakteri dengan senyawa aktif dari pewarna yang digunakan. Pewarna sendiri merupakan garam-garam yang tersusun atas ion positif dan ion negatif yang salah satunya berwarna dan biasa disebut kromogen. Menurut Tortora, et al. (2011), pewarnaan sederhana basa merupakan teknik pewarnaan dinding sel bakteri yang membuat sel terwarnai berdasarkan reagen pewarna yang digunakan pada lingkungan yang tidak berwarna. Sedangkan pewarnaan sederhana asam merupakan teknik pewarnaan lingkungan bakteri sehingga pada hasilnya akan terlihat sel putih yang dikelilingi oleh lingkungan yang terwarnai (Tortora, et al., 2011). Pada pewarnaan asam dan basa dari sampel bakteri Bacillus subtilis, Escherichia coli, Serratia marcescens, dan Staphylococcus aureus dapat disimpulkan bahwa bakteri dapat teramati dengan jelas karena bakteri terwarnai dengan baik dengan reagen masing-masing. Bacillus subtilis teramati memiliki bentuk batang, hal ini sejalan dengan

MODUL II – MUHAMMAD YUNUS SULTHAN AZHAR IDRUS – 11518053 pernyataan Aini (2013) yaitu Bacillus subtilis berbentuk batang dan mampu mempertahankan zat warna kristal violet. Bakteri Escherichia coli juga teramati dengan jelas memiliki bentuk batang dan juga sejalan dengan pernyataan Jawetz (2005) yaitu Escherichia coli memiliki bentuk batang pendek yan...