VÍAS DE INOCULACIÓN Y SANGRADO EN ANIMALES DE LABORATORIO PDF

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INFORME DE LABORATORIO VÍAS DE INOCULACIÓN Y SANGRADO EN ANIMALES DE
LABORATORIO...

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Práctica 5: VÍAS DE INOCULACIÓN Y SANGRADO EN ANIMALES DE LABORATORIO

INTRODUCCIÓN

Para distintos tipos de investigación se utiliza animales estos están en un espacio llama bioterio, el objetivo principal de tener un bioterio es asegurar la procedencia de animales sanos para que no interfieran en los trabajos científicos de las diferentes áreas de investigación, fabricación de vacunas, antígenos y su control. De estos animales se extrae muestras de sangre y también son inoculados estos procedimientos se debe tener cuidado con estos animales para no estresarlos y evitar que nos rasguñen o muerdan. Hay diferentes vías de inoculación como la nasal, oral, dérmica, intramuscular, endovenosa e intraperitoneal. (1)

RESULTADOS

Vía intraperitoneal

1. Con el ratón correctamente inmovilizado inclinarlo caudalmente y trazar una línea imaginaria que cruce su abdomen transversalmente justo sobre sus rodillas

2. La aguja deberá ser insertada sobre esta línea, en el lado derecho del animal y lo más cercano posible a la línea que divide longitudinalmente el abdomen. De esta manera disminuimos el riesgo de inyectar en

3. La aguja debe alcanzar una profundidad de aproximadamente medio centímetro (ratón) y debe insertarse con una inclinación de unos 30º con respecto a la superficie del abdomen.

4. Aspirar para asegurarse de que no se ha alcanzado ningún vaso sanguíneo, ciego o vejiga urinaria. 5. Si ningún fluido es aspirado, proceder a la inyección de la muestra. 6. Retirar la aguja y presionar ligeramente la zona de inyección.

Vía endovenosa

Localizar la vena del conejo frotar con alcohol ingresar la aguja Si aparece sangre al aspirar, la colocación de la aguja será la adecuada. De todas formas, es fácil comprobar que hemos accedido a la vena ya que, si la aguja ha sido alojada en el lumen de la vena, no se apreciará resistencia al presionar el émbolo de la jeringuilla de modo que la muestra fluirá sin dificultad en el torrente sanguíneo.

Una vez inoculada la muestra retirar la aguja y presionar la zona de inyección con un algodón para detener la hemorragia.

Vía intramuscular

Pueden ser necesarias dos personas para el correcto procedimiento de esta técnica, una para sujetar al animal y otra para la inoculación. Sujetar firmemente la pata trasera del animal y proceder a la inserción de la aguja en el sitio de inoculación.

Aspirar ligeramente para asegurarse de que no se ha perforado ningún vaso sanguíneo. El contenido de la jeringuilla debe ser expelido muy lentamente y la zona de inyección masajeada cuidadosamente una vez realizada la inoculación

COMENTARIO El uso de animales de laboratorio es de gran ayuda para la experimentación. Entre los animales usados en investigación están los primates no humanos, prosimios, gatos, perros, reptiles, anfibios, ovejas, cerdos, cabras, peces, insectos y roedores, estos últimos son los de mayor uso y, dentro de ellos, las ratas, ratones, conejos y cobayos. (2) Estos animales generalmente son criados en un lugar llama bioterio donde es fundamental asegurar la higiene y desinfección de las salas de alojamiento, y controlar constantes ambientales como temperatura, humedad relativa, ventilación, iluminación y ruido, ya que esto podría afectar al animal de experimentación. Se debe tener cuidado con manipulación de estos animales, por ejemplo, los ratones se deben sujetar desde el extremo proximal de la cola, luego se inmoviliza agarrándolos con una sola mano de la parte posterior, se debe tener sumo cuidado en la manipulación e inmovilización de los animales de experimentación por que pueden morder o lesionar con sus garras. (3) Las vías de inoculación pueden ser Intraperitoneal en este caso el animal se coloca con el lado ventral hacia arriba, se inserta la aguja en la piel en el cuadrante izquierdo inferior del abdomen, se introduce en la cavidad peritoneal. También tenemos la inoculación endovenosa, las sustancias se administran directamente en el torrente sanguíneo del animal, Intramuscular. La intramuscular, esta vía se utiliza para volúmenes pequeños, porque el músculo de los roedores es pequeño. (4) También hay otras vías de inoculación como la intranasal en este caso, el animal debe ser ligeramente anestesiado y manualmente restringido, permaneciendo con la cabeza elevada. La punta de la pipeta se coloca en los orificios nasales externos y entonces la solución se administra lentamente a las fosas nasales. También se puede inocular por vía intradérmica, el animal es anestesiado y luego se realiza el afeitado de la ubicación donde se administrará el producto, tiene que ser desinfectada con alcohol 70%, la piel de los animales se estira con el pulgar o el índice y la aguja se inserta justo por debajo de la capa superficial de la epidermis. (4)

Bibliografía: 1. MINISTERIO DE SALUD DEL PERÚ.GUÍA DE MANEJO Y CUIDADO DE ANIMALES DE LABORATORIO: RATÓN. Disponible en : http://bvs.minsa.gob.pe/local/INS/962_INS68.pdf 2. Romero-Fernandez Wilber, Batista-Castro Zenia, De Lucca Marisel, Ruano Ana, García-Barceló María, Rivera-Cervantes Marta et al . El 1, 2, 3 de la experimentación con animales de laboratorio. Rev. perú. med. exp. salud publica [Internet]. 2016 Abr [citado 2020 Dic 08] ; 33( 2 ): 288-299. Disponible en: http://www.scielo.org.pe/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S172646342016000200015&lng=es. http://dx.doi.org/10.17843/rpmesp.2016.332.2169.

3. GUIA PARA CUIDADO Y USO DE ANIMALES DE EXPERIMENTACIÓN. INSTITUTO NACIONAL DE TECNOLOGIA AGROPECUARIA Centro de Investigación en Ciencias Veterinarias. BUENOS AIRES, ARGENTINA. Disponible en: https://inta.gob.ar/sites/default/files/script-tmp-inta_gua_cuidado_y_uso_de_animales.pdf 4. Manejo de bioterio para roedores y lagomorfos. Cenida.una.edu.ni. Disponible en: https://cenida.una.edu.ni/Tesis/tnl70m777.pdf...