Practica 7. Bacterias acido-alcohol resistentes PDF

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Bacterias acido alcohol resistentes...

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BACTERIAS ÁCIDO- ALCOHOL- RESISTENTES Universidad Autónoma de Ciudad Juárez Microbiología 1 Dra. Elia Leonor Gómez Ramos Semestre enero – junio. 10 am – 11 am Resumen: Mycobacterium es una familia de bacilos aerobios inmóviles que no se pueden teñir con Gram, ya que son acido alcohol resistentes (BAAR). Este microorganismo es el agente causal de enfermedades importantes como la tuberculosis y la lepra. Para la identificación de éste se utiliza la tinción de ZiehlNeelsen y se realiza el diagnostico por medio de baciloscopia, realizando un conteo de campos microscópicos. Además, para el diagnóstico es necesario hacer un seriado de 3 a 5 muestras. En el presente trabajo realizamos la tinción y desarrollamos un conteo de 10 campos, en donde el promedio de bacilos fue de 1.3, dando como resultado una baciloscopia +. De esta forma podemos reconocer que aunque es fácil realizar el procedimiento, se torna mas complicado obtener un conteo exacto, además de que los bacilos no se tiñen con una intensidad fuerte y pueden llegar a confundirse. Palabras clave: Mycobacterium, bacilos, aerobios, Gram, BAAR, tuberculosis. Objetivo: Desarrollo de las técnicas para el aislamiento e identificación de las bacterias ácido alcohol resistentes, en especial Mycobacterium tuberculosis. Introducción: La familia de Mycobacterium son bacilos aerobios inmóviles y no esporulados, que causa enfermedades infecciosas como la tuberculosis y la lepra. Su pared celular tiene una alta concentración de lípidos, lo que hace a su superficie hidrófoba y les brinda una gran resistencia frente a desinfectantes y algunas tinciones.1 Cuando han sido teñidos, los bacilos no se pueden decolorar con soluciones acidas, a esto se le conoce como acido alcohol resistencia. Por tal motivo no se

puede realizar una tinción de Gram en estas bacterias.1 Para su identificación se utiliza la tinción de Ziehl- Neelsen, que utiliza el calor para que el colorante pueda atravesar la pared bacteriana.1 Una vez realizada la tinción, en los laboratorios clínicos se utiliza la baciloscopia, una práctica microscópica que se realiza para poder detectar los bacilos que se encuentran en una muestra. Para poder diagnosticar a un individuo, se realiza la observación de 100 campos microscópicos por muestra se necesita hacer un seriado de 3 a 5 muestras por paciente, ya que una de

las limitaciones que tiene esta técnica es que después de teñir los bacilos no se observan con facilidad, por o tanto se corre el riesgo de dar un falso negativo.1 Materiales y método: -

Carbón fucsina portaobjetos microscopio mechero azul de metileno alcohol acido Bacteria Mycoplasma

1. Se realizó una tinción de ZiehlNeelsen a una muestra de Mycoplasma. 2. Se realizó la baciloscopia de 10 campos. Resultados: Al finalizar la baciloscopia encontramos un total de 13 bacilos en 10 campos observados. El campo numero 3 presentó mayor numero de bacilos con 4. Se obtuvo una media (promedio) de 1.3, por lo tanto se considera baciloscopia positiva +. BACILOSCOPIA Campo Bacilos 1 0 2 0 3 4 4 0 5 2 6 2 7 3 8 1 9 0 10 1 Total 13 Promedio 1.3 Baciloscopia +

% = total de bacilos/ # de campos % = 13/10

%= 1.3

Resultado Negativo 0 Positivo +

# De Bacilos 0 en 100 campos 1 – 5 en 100 campos Positivo ++ 6 – 10 en 50 campos Positivo +++ >10 en 25 campos Esquema general para clasificación de la baciloscopia. Discusión: En el artículo “modificación de la técnica Ziehl- Neelsen para la detección de micobacterias con la utilización de microondas”2 de M.J. Alonso, el autor comenta que: “en anatomía patológica la técnica de Ziehl Neelsen se emplea como tinción diferencial para detectar micobacterias en distintos tejidos y muestras de punción con aguja fina, para lo cual los resultados no han sido óptimos. En este articulo se propone modificar la técnica, y concuerdo con el autor en que ésta no es lo suficientemente confiable, ya que se necesita tomar mas de 3 muestras por paciente para poder diagnosticarlo correctamente, y además no es fácil realizar el conteo, ya que la tinción puede quedar mal realizada. Según Toman: “La baciloscopia permite identificar tanto a las personas con alto riesgo de muerte como a las que requieren más medicación en el régimen terapéutico”,3 esté autor comenta otro

punto con el que concuerdo, pues menciona que “permite diagnosticar tanto a personas muy enfermas como a otras que no presentan síntomas severos”. Al realizar la baciloscopia podemos observar gran cantidad de bacilos en las personas con estadios muy avanzados y pequeñas cantidades en pacientes con un tiempo de infección corto. Mientras se encuentre una media de 1 en la baciloscopia se considera positiva. Por lo anterior mencionado concuerdo con el autor. Conclusión: La Mycobacterium es una bacteria de muy difícil diagnóstico, ya que habitualmente se utiliza la tinción de Gram y con este bacilo no se puede realizar gracias a su acido-alcohol resistencia. Por lo tanto el medico realiza el diagnostico de tuberculosis o lepra por la sintomatología que estas enfermedades provocan. Como futuros médicos es importante conocer la sintomatología que estos microorganismos producen y de igual manera la manera de interpretar los resultados de baciloscopia. Referencias 1. Temas de bacteriología y virología médica. Mycobacterias. G. Rodríguez. Página 396. 2. Modificaciones de la técnica de Ziehl- Neelsen para la detección de micobacterias con la utilización de microondas. M.J. Alonso, M.T. Corcuera, M. Roldan. Técnicas en Patología. Centro Nacional de Investigación Clínica y Medica Preventiva.

Instituto de Salud Carlos III. Madrid, España. 3. Tuberculosis. Detección de casos, tratamiento y vigilancia. Kurt Toman. Segunda edición. Organización panamericana de la salud, 2006. Washington, D.C. TRATAMIENTO PARA TUBERCULOSIS Fase intensiva Rifampicina Pirazinamida Isoniazida Etambutol Fase de sostén

Isoniazida Rifampicina

Diario, hasta completar 60 dosis. lunes – sábado 600 mg 1.5 – 2 g 300 mg 1.2 g Lunes, miércoles y viernes hasta completar 45 dosis 800 mg 600 mg

Anexo: Píramide de exito para el tratamiento de tuberculosis 1ra linea: isoniacida (H), rifampicina (R), pirazinamida (Z), etambutol (E), estreptomicina (S). 2da línea: kanamicina (km), amikacina (Am), capreomicina (Cm), etionamida (Eto), protionamida (Pto), ofloxacina (Ofx), levofloxacina (Lfx), moxifloxacina (Mfx), ciclocerina (Cs)....