Seminari 1 i 2 - PRIMERO ENFERMERIA CAMPUS CLINIC PDF

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PRIMERO ENFERMERIA CAMPUS CLINIC...

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SEMINARIO 1. Recogida de muestras microbiológicas OBJETIVO Conocer como se han de recoger las muestras para que el laboratorio pueda realizar el mejor diagnóstico microbiológico CICLO DEL DIAGNÓSTICO MICROBIOLÓGICO Postanalític a

Preanalítica

MUESTR A

Analític a SOLICITUD -

Datos del paciente Tipo de muestra y determinación solicitada Nombre del facultativo/ enfermera responsable

 

Motivos, sospecha y diagnóstico clínico Tratamiento antibiótico si procede

PROCEDIMIENTO DE RECOGIDA DE MUESTRAS -

Informar al paciente del procedimiento que se realizará Preparar todo el material necesario Verificar que todo este correcto Etiquetar todas las muestras Lavado higiénico de manos y uso de guantes

NORMAS GENERALES -

Esterilidad en la recogida Rapidez en el transporte de las muestras (menos de 2h)

RECOGIDA DE MUESTRAS ESPECÍFICAS

HEMOCULTIVO (cultivos de sangre)

IMPORTANTE:

Se utiliza para detectar bacteriemia (en hospital Clínic se utilizan los frascos de vector)

-No tapar la base ni el código de barras del frasco de hemocultivo

1. Lavar la zona a pinchar (del bote del hemocultivo) con agua y detergente o bien alcohol al 70%, secar con gasas estériles. Antisepsia de la piel con clorhexidina alcohólica al 2% y dejar secar. 2. Desinfectar el tapón del frasco con alcohol 70% 3. Extracción de la sangre de 15-20ml por toma (según el sistema) 4. El orden de llenado es muy importante y varía según el tipo de sistema que se emplee para la extracción * 5. La recogida será 2-3 muestras durante el pico febril 6. Conservar a temperatura ambiente URINOCULTIVO (cultivos de orina)

-Se hace una única extracción para inocular los 2 frascos (por lo tanto, es muy importante el orden de llenado) -Hay que tener cuidado con que el frasco anaerobio sea totalmente anaeróbico al principio y al final de la toma de muestras

*ORDEN DE LLENADO (según sistema): - Con jeringa: Primero llenar el anaerobio - Con palmito: Primero llenar el aerobio

El personal sanitario ha de instruir al paciente respecto a la técnica adecuada para la recolecta de la muestra. ENFERMOS NO SONDADOS (Micción espontánea) -

La muestra debe ser la primera micción de la mañana o con una retención de mínimo 4-5 horas sin ir al baño Debe haber una higiene previa de los genitales externos Hay que desechar la primera parte de la micción para que la orina arrastre posibles MO de la superficie (si no se hace podrían darse falsos positivos) Recoger parte del chorro medio en el envase Llevar la muestra al laboratorio con rapidez

ENFERMOS SONDADOS Muy frecuente en el ámbito hospitalario Las sondas se clasifican según los cruces (hay de 2 y de 3 vías) -

Hay que conseguir una mínima retención de orina (para eso se pinza la sonda 1-2 h antes) Hay que desinfectar la sonda con povidona iodada para poder pincharla y la orina debe ser recogida en un frasco estéril Dejar fluir por unos instantes la orina a través de la sonda desconectada Punción directa con jeringa y aguja

RECIEN NACIDOS

-Bolsa adherida perineal (En pacientes recién nacidos con pañal) 1. Higiene previa de la zona perineal con agua y jabón. Dejar secar con una gasa estéril 2. Poner una bolsa perineal adherida (la cual recogerá la orina) 3. Traspaso de la orina a un bote estéril

¡ACLARACIÓN! Si han pasado 20 minutos desde el principio del proceso y el bebé no ha miccionado, la bolsa perineal o la zona podría estar infectada y hay que extraer la bolsa y volver a hacer todo el

-Punción suprapúbica CULTIVO POSTATITIS BACTERIANA Para realizar la recogida de muestras se debe hacer un masaje prostático y debe haber una recogida de muestras antes y después de este.

-Si la primera muestra contiene más MO que la segunda, el problema proviene de la vejiga

1. ORINA PRE-MASAJE (se recoge de la misma forma que -Si la segunda muestra contiene más un urinocultivo normal) (Aprox. 10mL) MO, la infección proviene de la 2. MASAJE PROSTÁTICO postata o Primero localizar la próstata (para ello, meter -Prostatitis: si orina post-masaje tiene el dedo en el ano hasta encontrar el coxis 10 veces más MO que la pre-masaje donde estará la próstata) o Una vez allí estimular la zona 3. ORINA POST-MASAJE (igual recogida que con un urinocultivo normal) (Aprox. 10mL) CULTIVO DE HECES COPROCULTIVO -

Se recogerá con un depresor Aprox. 1-2 gramos de muestra o la medida de una nuez Si la muestra es líquida recoger 5-10ml Recipiente estéril con tapón de rosca y sin conservantes La muestra ha de ser reciente (menos de 2h) No es aconsejable conservar en el frigorífico si el transporte es antes de las 2H (se ha de transportar a temperatura ambiente)

PARÁSITOS -

Recoger 3 muestras preferentemente en días no consecutivos Es recomendable seguir una dieta baja en grasas y en residuos alimentarios (fibra) y no tomar antibióticos de 3-7 días antes de la recogida (Para evitar artefactos en las muestras) Cantidad de heces: Medida de una nuez o 10 ml si son líquidas Conservar en el frigorífico

TEST O CINTA DE GRAHAM Se utiliza para Enterobius vermicularis/oxiuros

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Es una infección muy frecuente en niños La hembra y el macho copulan y por la noche la hembra sale a dejar miles de huevos en el ano

Proceso: 1. Se coge una porta objectos y se le coloca un celo transparente encima dejando la parte adhesiva a la vista 2. Antes de la primera defecación del niño y de la higiene, se hace pasar la cara adhesiva del celo por el ano para que los huevos queden enganchados MUESTRAS RESPIRATORIAS -

Frotis faringo-amigdalar Frotis aspirado nasofaríngeo Senos paranasales (personal especializado) Cavidad oral (En Hongos) Esputo Jugo gástrico (en micobacterias, en pacientes con tuberculosis) Bronco aspirado (BAS) Lavado broncoalveolar (RBA) (BAL) Biopsias de pulmón

ESPUTO -

Se recomienda una higiene bucal (enjuague) con agua o suero que no tengan ningún tipo e resto de agentes desinfectantes Obtener el esputo después de una expectoración profunda (preferentemente a primera hora de la mañana) Cantidad suficiente para el análisis: 2-10ml muestra Rechazar macroscópicamente las muestras que correspondan a saliva Traslado al laboratorio antes de las 2h o conservar en nevera a 4ºC

Es importante que no haya saliva en las muestras -

Para ver que no hay saliva hay que mirar la cantidad de células epiteliales que hay en la muestra (si hay muchas, estas muestras provienen de la boca y no del pulmón)

Escala de valoración del esputo: GRAD O 1 2 3 4 5 6 L.C.R (Punción lumbar) -

CELULAS EPITELIALES

NEUROFILOS

VALOR

>25 >25 >25 10-25 25 >25

No cultivo No cultivo No cultivo Cultivo Cultivo Cultivo

Entre L4-L5 o L3-L4 Precauciones de esterilización: Guantes, mascarillas, zona esterilizada adecuadamente, manipulación y envase de recogida estéril El volumen de la extracción depende de las necesidades diagnósticas

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Nunca transportar en frigorífico ya que los MO podrían desnaturalizarse. Transporte rápido

MUESTRA INTRAVASCULAR (punta de catéter) -

Envase siempre estéril Retirada de catéter con la máxima antisepsia posible Cortar la punta del catéter endovascular e introducir el bote estéril (solo 2-3 cm) Se puede conservar en frigorífico a 4ºC pero no es recomendable

SEROLOGÍA -

Tubo estéril de 100 cc de sangre coagulada Enviar al laboratorio o mantener a temperatura ambiente (nunca nevera) En caso de duda, contactar con el laboratorio

-

Diagnóstico Directo: Detección de antígenos (Ag) Diagnóstico indirecto: Detección de anticuerpos (Ac)

MUESTRAS PARA VIRUS -

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Se han de recoger en la fase precoz de la enfermedad y a veces hay que recoger varias muestras (Frotis, sangre, saliva, orina…) La muestra de sangre con el anticoagulante apropiado a la prueba (Sobre todo si es para biología molecular) o No heparina Medio especial de transporte: Medio MEM con antibióticos y antifúngicos No escobillones con el medio de transporte de cultivos bacterianos

ERRORES MÁS FRECUENTES CONTAMINACIÓN DE MUESTRAS -

Recogida de orina sin efectuar higiene urogenital previa En portadores de sondas, abrir la conexión de la bolsa o sonda para recoger directamente la diuresis En caso de heridas infectadas recoger muestras de la zona superficial

FALSOS POSITIVOS -

El urinocultivo a temperatura ambiente si esta 2h, triplicará el número de gérmenes Una desinfección incorrecta de los brotes de hemocultivos y una deficiente antisepsia de la zona a pinchar pueden dar falsos positivos

FALSOS NEGATIVOS -

Poner hemocultivos y L.C.R en la nevera Transporte incorrecto de la muestra (la muestra se puede desecar o puede inactivarse el microorganismo)

MÉTODOS DE SUPERVISIÓN CRITERIOS DE RECHAZO DE MUESTRAS

Rechazar muestras cuando: -

Muestra no etiquetada Petición sin los datos necesarios Transporte prolongado Contenedor inadecuado (anticoagulante, formol…) Muestra no adecuada para el análisis que se solicita Muestras duplicadas en el mismo día

SEMINARIO 2. Prevención de la transmisión de microorganismos por el personal de enfermería INFECCIONES NOSOCOMIALES: Infecciones que se transmiten en el ámbito sanitario PRECAUCIONES EN EL MEDIO HOSPITALARIO Objetivo: -

Evitar la propagación de enfermedades transmisibles a: o Otros pacientes o Familiares y visitantes o Trabajadores del centro

CLASIFICACIÓN DE LAS PRECAUCIONES -

Precauciones estándar (aplicables a todos los pacientes independientemente de su diagnóstico) Precauciones en casos específicos: o Precauciones por contacto o Precauciones de aislamiento para evitar la transmisión por aire o Precauciones de aislamiento para evitar la transmisión por gotas

PRECAUCIONES ESTÁNDAR Colocación de EPIS cada vez que pueda haber contacto con: -

Sangre Cualquier fluido corporal, secreciones o excreciones Membranas mucosas Piel no íntegra

Precauciones: -

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Higiene de manos (al ponerse y quitarse los EPIS) Elementos de protección de barrera o Guantes, mascarilla (en maniobras que puedan generar aerosoles), protectores oculares, batas Habitación (se pueden compartir acaso que se este aislado) Equipos y material de curas o Limpieza, desinfección y esterilización Ropa de cama (Hay maniobras especiales para poner y quitar la ropa de cama de los pacientes) (las manos no pueden estar en contacto con la parte de ropa de cama que ha estado en contacto con el paciente)

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Limpieza de la habitación (lejía 5%) Prevención a exposiciones accidentales a sangre y fluidos orgánicos o Material punzante o cortante: agujas, bisturís… (van en contenedores específicos normalmente de color amarillo) (los contenedores no deben estar llenos más de un 75%) Higiene respiratoria o Estornudad y toser de manera correcta: Coger un clínex, cubrir boca y nariz, toser y arrugar después el papel con la misma mano y tirar.  Utilizar la parte interna del codo si no se tiene esa opción Prácticas seguras en la administración de inyecciones Prácticas seguras para punciones lumbares (muy buena desinfección y uso de mascarillas)

PRECAUCIÓN CON HONGOS El Aspergillus spp es un componente común en la flora fúngica del aire libre -

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Actividades de limpieza: o Anderson (1996): Bote en sala de hematología  En una sala de hematología se hizo una toma ambiental antes de limpiar y desinfectar. Después de la limpieza con un aspirador se volvió a hacer la toma de muestras ambientales  Se demostró que en la segunda muestra había muchas más esporas fúngicas que en la segunda ya que con el uso del aspirador estas se habían diseminado por el ambiente.  Por esta razón esta terminantemente prohibido el uso de aerosoles y aspiradoras para la limpieza hospitalaria Plantas y tiestos o Thompson (1994): No es recomendable llevar plantas a los pacientes porque tienen grandes concentraciones de esporas de Aspergillus

PREVENCIÓN Y CONTROL DE MICROORGANISMOS MULTIRESISTENTES Cortar vías de transmisión, entre la fuente de infección y el huésped susceptible AISLAMIENTO DE CONTACTO -

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Habitación individual Higiene de manos estándar Uso de guantes (en todo contacto con el paciente) Bata (siempre que haya contacto con el paciente o entorno) (colocar una bata desechable encima del uniforme) Máscara: misma indicación que para las precauciones estándar (máscara quirúrgica) Ropa: Sacar de la habitación en una bolsa cerrada Residuos: sacar de la habitación en bolsa cerrada Material clínico: Entrar en la habitación el mínimo imprescindible. De uso exclusivo o desechable a ser posible Traslado de enfermo: Aviso a recepción

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o Si hay una herida abierta hay que colocar una talla por tal de que no se disemine el MO Limpieza y desinfección de la habitación con asociación de aldehídos. Material de limpieza de uso exclusivo Familiares y visitantes: Están restringuidas pero permitidas o En la mayor parte de asilamientos por contacto los familiares solo necesitan higiene de manos al entrar y salir o En caso de proporcionar EPIS a los familiares hay que explicarles las precauciones, cuidados y donde tirar los EPIS administrados

AISLAMIENTO POR GOTAS O AIRE Cada vez que tosemos o estornudamos expulsamos gotas en las que hay multitud de microorganismos (si son más grandes sedimentan y si son pequeñas quedan suspendidas en el aire y son más peligrosas -

Gotitas de Pflügge (>5micras) → Aislamiento por gotas Núcleos goticulares de Wells (< 5micras) → Aislamiento por aire

AISLAMIENTO POR GOTAS Transmisión por gotas gruesas o medianas a una distancia de mas o menos 1 metro -

Mismas condiciones que en aislamiento por contacto, pero hay que ponerse mascarilla y en caso de transporte de paciente a el también o Uso de mascarilla quirúrgica (antes de entrar a la habitación y en traslado paciente)

AISLAMIENTO POR AIRE Transmisión de núcleos goticulares que queden suspendidos en el ambiente y persisten en el tiempo -

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Mascarilla facial FFP2 antes de entrar en la habitación Habitación individual con presión negativa (habitáculos en que la presión interior es diferente a la exterior y por tanto no deja salir el aire de la habitación) (igualmente todo el aire es filtrado) Traslado del enfermo o Paciente: mascarilla quirúrgica (si no se tiene el material necesario siempre poner una de protección superior)

TIPOS DE MASCARILLAS -

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Mascarilla quirúrgica: o Evita las transmisiones de agentes infecciosos por parte de la persona que lo lleva o No protege al usuario frente a la inhalación de un gran número de agentes externos Mascarilla de protección “respirador”: o Protege al usuario frente a la inhalación de contaminantes ambientales o En función de la toxicidad la peligrosidad, la concentración y el tiempo de exposición se unos equipos FFP1, FFP2 o FFP3

o

La diferencia entre estas mascarillas es el tamaño del poro de filtro

Todas las mascarillas se pueden encontrar con carbón activo o sin y con o sin válvula. -

Estas características no tienen nada que ver con el grado de protección de la mascarilla Con carbón activo: indicada en ambientes con vapores orgánicos y olores molestos (previene la irritación) Con o sin válvula: Reduce la acumulación de calor y la humedad interior

COLOCACIÓN DE MASCARILLA QUIRÚRGICA -

Colocación cubriendo la nariz, boca y mentón Ajustar la pieza flexible sobre el puente nasal (hay que modelarla para que se ajuste bien) Atar las cintas a la parte posterior de la cabeza sin cruzarlas

Colocación: 1. 2. 3. 4. 5.

Colocar la máscara en la palma de la mano con la pieza metálica en los dedos Colocar la parte inferior de la máscara por debajo de la barbilla y con la pieza metálica en la nariz Colocar la banda de sujeción por debajo de las orejas y la otra por la parte superior de la coronilla Utilizando las 2 manos moldear el clip nasal Comprobar el ajuste de la máscara y la válvula

SECUENCIA DE RETIRADA DE EPIS 1. 2. 3. 4.

Guantes Gafas o protector facial Bata Máscara o respirador

¡IMPORTANTE!: Higiene de manos con solución hidroalcohólica después de la retirada de cada EPI

¿DONDE RETIRAR EL EQUIPO DE PROTECCIÓN? -

A la entrada, antes de dejar la habitación o en la antesala Retirar el respirador fuera de la habitación y después de cerrar la puerta

RETIRAR LA BATA DE PROTECCIÓN Hay que quitar la bata de forma que las manos nunca toquen la parte amarilla de la bata (parte exterior) 1. Desatar las cintas 2. Retirarla con cuidado, hacia abajo del cuello y los hombros, girándola hacia fuera (revés) 3. Girar la parte externa contaminada hacia el interior 4. Plegar o enrollar de manera que la parte externa quede hacia el interior 5. Desechar la bata MESURES D’AÏLLAMENT PER AGENT BIOLÒGIC (GRUP IV) Para la correcta aplicación hay formaciones específicas

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Habitaciones de aislamiento especial (de presión negativa)

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Camilla de Max. SEG

AGENTES DEL GRUPO DE RIESGO IV Agentes patógenos que suelen provocar enfermedades graves en el ser humano o los animales y que se transmiten fácilmente de un individuo a otro, directa o indirectamente. Normalmente no existen medidas preventivas y terapéuticas eficaces. No hay ninguna bacteria, hongo o parasito en este grupo VIRUS: -

Arenaviridae: Complejos virales LCM-Lassa: virus de Lassa Complejos virales Tacaribe: virus Junin, virus Machupo, virus Sabia, virus Guanarito Bunyaviridae: NairovirusVirus de la fiebre hemorrágica deCrimea/Congo Filoviridae: Virus Marburg, Virus Ebola Flaviviridae: Virus Kyasanur Poxviridae: Variola (major & minor). Virus no clasificados: Morbillivirus equino

COLOCACIÓN DE EPIS EN LA ANTECÀMARA 1. Quitarse joyas, recoger pelo y colocar-se un gorro de quirófano. Colocarse pijama quirúrgico de un solo uso. Realizar higiene de manos con solución hidroalcohólica 2. Ponerse los guantes de nitrilo interiores 3. Ponerse el mono sin la capucha y sin abrochar. Si se dispone de ello, colocar la coma de las mangas sobre los guantes interiores 4. Ponerse las polainas 5. Ponerse la máscara FFP3 y comprobar que se ajuste de manera adecuada 6. Abrocharse el mono i colocar la capucha del mono 7. Ponerse las gafas integrales y ajustarlas correctamente sobre la protección respiratoria 8. Ponerse los guantes de nitrilo exteriores cubriendo los puños del mono 9. Entrar a la habitación RETIRADA DE LOS EPIS EN LA SALIDA *Cada vez que se quite una EPI se ha de hacer una higiene con solución hidroalcohólica 1. 2. 3. 4. 5.

Realizar la desinfección de los guates exteriores con solución hidroalcohólica Retirar los guantes exteriores i salir a la antecámara Realizar desinfección de guantes internos (sin desinfectar las muñecas) Retirar gafes Realizar desinfección de guantes internos

6. 7. 8. 9. 10. 11. 12. 13. 14. 15. 16. 17. 18. 19. 20. 21.

Retirar capucha externa Realizar desinfección de guantes internos Abrir con cuidado las solapes que tapan la cremallera Realizar desinfección de guantes internos Abrir la cremallera sin tocar la parte interior del mono Realizar desinfección de guantes internos Retirar el mono tocando siempre la parte externa de la misma comenzando por enrollar la capucha. Dejar expuesta la parte interna (no contaminada) del mono Realizar desinfección de guantes internos Retirar mascarilla, desinfección de guantes i retirar el gorro de quirófano Realizar desinfección...